Тучные клетки циклически осуществляют синтез и выведение в экстрацеллюлярный матрикс широкого спектра продуктов биогенеза с различной биологической активностью и являются регуляторами местного гомеостаза как в норме, так и при патологии - воспалении, онкогенезе и др. Относительная специфичность классических гистохимических методов выявления тучных клеток по отношению к хромогенным субстратам вызывает определенные затруднения в селективном исследовании компонентов секретома тучных клеток, например, гепарина, гистамина, химазы или триптазы. Поэтому большую популярность приобрели иммуноморфологические методики, выявляющие конкретные субстраты и позволяющие дифференцировать компоненты секретома тучных клеток. Медиаторы, вырабатываемые тучными клетками, способствуют неоангиогенезу, фибриллогенезу и реэпителизации во время процесса репарации. Целью нашей работы было изучение триптазного профиля популяции тучных клеток кожи крыс при раневом процессе с помощью оригинальной комбинированной методики иммуногистохимического окрашивания. Материал и методы. В эксперименте приняли участие 12 крыс линии Wistar с разделением на две группы - интактную (n=6) и с имеющимся раневым процессом кожи в области холки (n=6). Триптазный профиль тучных клеток оценивали на 7-е сутки раневого процесса в сравнении с группой контроля. Результаты. Полученные результаты показали существенное возрастание количества триптаза-позитивных тучных клеток на 7-е сутки раневого процесса в коже на фоне общего увеличения популяции тучных клеток. Достоверно повышался интрагранулярный резерв триптазы. В отличие от контроля, где тучные клетки с единичными триптаза-позитивными гранулами доминировали, при раневом процессе в коже практически не выявлялись клетки данного типа (43.69±2.9% и 8.55±0.9%). Уровень содержания триптаза-позитивных тучных клеток с полным заполнением цитоплазмы в контрольной группе и группе животных с раневым процессом составил 14.24±1.2% и 38.03±2.9% соответственно. Заключение. Таким образом, при моделировании раны выявляется увеличение синтеза триптазы как в отдельно взятых ТК, так и внутри всей популяции ТК. Данный факт показывает, что протеазы тучных клеток могут стать потенциальной терапевтической мишенью для улучшения регенерации ран за счет коррекции иммуногенеза, воспаления и волокнообразования.
Mast cells cyclically synthesize and excrete a wide range of biogenesis products with different biological activities into the extracellular matrix and are regulators of local homeostasis both in normal conditions and in pathology - inflammation, oncogenesis, etc. The relative specificity of classical histochemical methods for detecting mast cells in relation to chromogenic to substrates causes certain difficulties in the selective study of the components of the secretome of mast cells, for example, heparin, histamine, chymase or tryptase. Therefore, immunomorphological techniques have become very popular, which identify specific substrates and allow differentiation of the components of the mast cell secretome. Mediators produced by mast cells promote neoangiogenesis, fibrillogenesis and re-epithelialization during the repair process. The aim of our work was to study the tryptase profile of the mast cell population of rat skin during the wound process using an original combined method of immunohistochemical staining. Material and methods. The experiment involved 12 Wistar rats divided into two groups - intact (n=6) and with the existing wound process of the skin in the withers (n=6). The tryptase profile of mast cells was assessed on the 7th day of the wound process in comparison with the control group. Results. The results obtained showed a significant increase in the number of tryptase-positive mast cells on the 7th day of the wound process in the skin against the background of a general increase in the population of mast cells. Intragranular tryptase reserve was significantly increased. In contrast to the control, where mast cells with single tryptase-positive granules dominated, during the wound process, cells of this type were practically not detected in the skin (43.69±2.9% and 8.55±0.9%). The content of tryptase-positive mast cells with complete filling of the cytoplasm in the control group and the group of animals with a wound process was 14.24±1.2% and 38.03±2.9%, respectively. Conclusion. Thus, when modeling a wound, an increase in tryptase synthesis is detected both in individual MCs and within the entire MC population. This fact indicates that mast cell proteases can become a potential therapeutic target for improving wound regeneration by correcting immunogenesis, inflammation and fiber formation.